ПАП-тест: можливості та обмеження
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Анотація
Рак шийки матки (РШМ) прогресує повільно, збільшуючи ймовірність раннього виявлення передпухлинних уражень за допомогою цитологічного скринінгу. Цитологія шийки матки є одним із першочергових методів ефективного дослідження РШМ, який завдяки ранньому виявленню та своєчасному лікуванню зумовлює стабільне зниження захворюваності та смерті від інвазивного РШМ.
Результати багатьох досліджень продемонстрували, що специфічність звичайного мазка Папаніколау становить приблизно 80–100%, його чутливість коливається від 30% до 80%, а рівень некоректності цього методу становить від 5% до 25%.
При традиційній підготовці мазка лише невеликий відсоток зібраних клітин потрапляє на предметне скло, водночас аномальні клітини можуть бути викинуті та не проаналізовані. Під час перегляду предметного скла клітини, які висохли та зліплися разом, можуть перешкоджати візуалізації атипових клітин.
Для подолання цих обмежень у 1996 р. як альтернатива традиційному ПАП-тесту булла представлена рідинна цитологія – технологія підготовки предметних скелець, на яких клітини розміщені в один шар. Ця технологія перевершила звичайний ПАП-тест завдяки покращеній фіксації, зменшенню факторів затемнення та стандартизованому переносу клітин. Під час проведення рідинної цитології зразки збираються шляхом повного занурення цитощіточки у флакон, який містить рідину-консервант, завдяки чому клітини зберігаються та фіксуються одночасно, на відміну від звичайних мазків, де зразок наноситься на предметне скло та фіксується окремо. На сьогодні відомі дві основні методики підготовки на основі рідинної цитології: ThinPrep і SurePath.
Результати цитології описують за системою Bethesda. Класифікація Bethesda користується широким визнанням, оскільки вона відповідає клінічній картині, відтворює характер уражень і, отже, орієнтована на лікування з бажаною процедурою подальшого спостереження.
Незаперечною перевагою ПАП-тесту методом рідинної цитології є можливість виконувати як цитологічні, так і молекулярні дослідження, зокрема ВПЛ, в одному зразку. Ця можливість полегшила впровадження двоетапної стратегії, коли тестування на ВПЛ використовується як сортувальний тест для цитології ASC-US або плоскоклітинного інтраепітеліального ураження низького ступеня, або коли цитологію застосовують для сортування ВПЛ-позитивних жінок.
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.
Посилання
World Health Organization. WHO guideline for screening and treatment of cervical pre-cancer lesions for cervical cancer prevention, second edition: use of mRNA tests for human papillomavirus ( HPV), 6 edition [Internet]. Geneva: WHO; 2021. 63 p. Available from: https://www.who.int/publications/i/item/9789240040434.
Fedorenko ZP. The structure of morbidity and mortality 2021 [Internet]. Bulletin of the National Cancer Registry of Ukraine. № 24. 2023. Available from: http://www.ncru.inf.ua/publications/BULL_24/index.htm.
Burka OA, Lygyrda NF, Kutsovol VV, Svintsitska AV. The cytological component of cervical cancer screening: Causes of false negative and false positive results, and ways to avoid them. Reprod Endocrinol. 2021;57:61–6. doi: 10.18370/2309-4117.2021.57.61-67.
Arbyn M, Gultekin M, Morice P, Nieminen P, Cruickshank M, Poortmans P, et al. The European response to the WHO call to eliminate cervical cancer as a public health problem. Int J Cancer. 2021;148(2):277–84. doi: 10.1002/ijc.33189.
Lin F, Ximing JY, Xu H, Qian X, Wang H, editors. Practical Anatomic Pathology Series [Internet]. Practical Cytopathology. 2020. doi: 10.1007/978-3-030-24059-2.
Wong L, Ccopa A, Diaz E, Valcarcel S, Mauricio D, Villoslada V. Deep Learning and Transfer Learning Methods to Effectively Diagnose Cervical Cancer from Liquid-Based Cytology Pap Smear Images. Inter J Online Biomed Engineer. 2023;19(4):77–93. doi: 10.3991/ijoe.v19i04.37437.
Chatterjee T, Gill SS, Rac R. Standardization of cervical/vaginal cytopathology reporting: the bethesda system (tbs) for reporting cervical/vaginal cytologic diagnoses. Med J Armed Forces India. 2000;56(1):45–9. doi: 10.1016/S0377-1237(17)30090-4.
Cirkel C, Barop C, Beyer DA. Method comparison between Munich II and III nomenclature for Pap smear samples. J Turk Ger Gynecol Assoc. 2015;16(4):203–7. doi: 10.5152/jtgga.2015.0147.
Darragh TM, Colgan TJ, Cox JT, Heller DS, Henry MR, Luff RD, et al. The Lower Anogenital Squamous Terminology Standardization Project for HPV-Associated Lesions: background and consensus recommendations from the College of American Pathologists and the American Society for Colposcopy and Cervical Pathology. Arch Pathol Lab Med. 2012;136(10):1266–97. doi: 10.5858/arpa.LGT200570.
World Health Organization. Cervix Cancer Screening. IARC Handbooks of Cancer Prevention; Vol. 10. [Internet]. France: IARC Working Group on the Evaluation of Cancer Preventive Strategies; 2005. 313 p. Available from: https://publications.iarc.fr/Book-And-Report-Series/Iarc-Handbooks-Of-Cancer-Prevention/Cervix-Cancer-Screening-2005.
Nayar R, Wilbur DC. The Bethesda System for Reporting Cervical Cytology: A Historical Perspective. Acta Cytol. 2017;61(4-5):359–72. doi: 10.1159/000477556.
Pangarkar MA. The Bethesda System for reporting cervical cytology. Cytojournal. 2022;19:28. doi: 10.25259/CMAS_03_07_2021.
Alrajjal A, Pansare V, Choudhury MSR, Khan MYA, Shidham VB. Squamous intraepithelial lesions (SIL: LSIL, HSIL, ASCUS, ASC-H, LSIL-H) of Uterine Cervix and Bethesda System. Cyto J. 2021;18:16. doi: 10.25259/Cytojournal_24_2021.
Nayar R, Wilbur DC. The Bethesda System for Reporting Cervical Cytology: A Historical Perspective. Acta Cytol. 2017;61(4-5):359–72. doi: 10.1159/000477556.
Singh VB, Gupta N, Nijhawan R, Srinivasan R, Suri V, Rajwanshi A. Liquid-based cytology versus conventional cytology for evaluation of cervical Pap smears: experience from the first 1000 split samples. Indian J Pathol Microbiol. 2015;58(1):17–21. doi: 10.4103/0377-4929.151157.
Crum C, Huh W. Cervical and vaginal cytology: Interpretation of results [Internet]. UpToDate. 2019. Available from: https://www.uptodate.com/contents/cervical-cancer-screening-the-cytology-and-human-papillomavirus-report.
Dasgupta S. The Efficiency of Cervical Pap and Comparison of Conventional Pap Smear and Liquid-Based Cytology: A Review. Cureus. 2023;15(11):e48343. doi: 10.7759/cureus.48343.
Kaban I, Bacanakgil BH, Koca S. The comparison of two methods in cervical smear screening – which method is better for smear adequacy rates? Ginekol Pol. 2021;92(5):335–8. doi: 10.5603/GP.a2020.0185.
Banerjee D, Mittal S, Mandal R, Basu P. Screening technologies for cervical cancer: Overview. Cytojournal. 2022;19:23. doi: 10.25259/CMAS_03_04_2021.
Patel N, Bavikar R, Buch A, Kulkarni M, Dharwadkar A, Viswanathan V. A Comparison of Conventional Pap Smear and Liquid-Based Cytology for Cervical Cancer Screening. Gynecol Minim Invasive Ther. 2023;12(2):77–82. doi: 10.4103/gmit.gmit_118_22.
Armstrong SF, Guest JF. Cost-Effectiveness and Cost-Benefit of Cervical Cancer Screening with Liquid Based Cytology Compared with Conventional Cytology in Germany. Clinicoecon Outcomes Res. 2020;12:153–66. doi: 10.2147/CEOR.S234385.
Rezende MT, Bianchi AGC, Carneiro CM. Cervical cancer: Automation of Pap test screening. Diagn Cytopathol. 2021;49(4):559–574. doi: 10.1002/dc.24708.
World Health Organization. Cervical Cancer Screening. IARS Handbook of Cancer Prevention; Vol. 18 [Internet]. France: International Agency for Research on Cancer; 2022. 468 p. Available from: https://publications.iarc.fr/Book-And-Report-Series/Iarc-Handbooks-Of-Cancer-Prevention/Cervical-Cancer-Screening-2022.
Mustafa WA, Ismail S, Mokhtar FS, Alquran H, Al-Issa Y. Cervical Cancer Detection Techniques: A Chronological Review. Diagnostics (Basel). 2023;13(10):1763. doi: 10.3390/diagnostics13101763.
Hou X, Shen G, Zhou L, Li Y, Wang T, Ma X. Artificial Intelligence in Cervical Cancer Screening and Diagnosis. Front Oncol. 2022;12:851367. doi: 10.3389/fonc.2022.851367.